產品細節圖:

通用型DNA純化回收試劑盒

品牌：genefist | 貨號：GF214-03

所屬大類 : 試劑

所屬小類 : 常用生化試劑

品牌 : genefist

規格 : 200次

原價 : ￥944.00

促銷價 : ￥944.00

儲存條件

該試劑盒置于室溫（15-25℃）干燥條件下，可保存18個月，更長時間的保存可置于2-8℃。2-8℃保存條件下，若溶液產生沉淀，使用前應將試劑盒內的溶液在室溫放置一段時間，必要時可在37℃水浴中預熱10 min，以溶解沉淀。

產品簡介及特性

本試劑盒采用獨特的緩沖液體系和離心吸附柱，既能從TAE或TBE瓊脂糖凝膠中回收100 bp-20 kb大小的DNA片段，又能用于直接純化PCR產物，滿足多種實驗需要。整個純化過程可在15分鐘完成、不需進行苯酚萃取及酒精沉淀、純化的DNA無鹽類或大分子的污染。

如果回收前DNA量為1-5ug，建議選用超薄DNA產物純化試劑盒GF203或超薄瓊脂糖凝膠回收試劑盒DF208，推薦洗脫液體積20-50ul。

a.使用相同的溶液，可進行三種不同的應用（PCR 產物純化、DNA 產物純化、膠體回收）。

b.每一離心管柱可處理達 150ul 的 DNA 溶液或 PCR 反應產物，DNA 回收率可達 80%~95%。

c.可用于以 TAE 或 TBE 緩沖液配制的瓊脂糖凝膠的 DNA 回收，DNA 回收率可達 60~90%。

注意事項

1.電泳時應使用新的電泳緩沖液，以免影響電泳和回收效果。

2.如下一步實驗要求較高，則應盡量使用 TAE 電泳緩沖液。

3.切膠時，紫外照射時間應盡量短，以免對 DNA 造成損傷。

4.洗脫緩沖液加量應根據回收前DNA量來決定：如回收前DNA只有1-5μg左右（推薦選用GF203或GF208超薄型試劑盒），加20-50μl洗脫液；如回收前有5-15μg左右DNA，加30-100μl洗脫緩沖液；如回收前有15-30μg左右DNA，加50-300μl洗脫緩沖液。

5.回收率與初始 DNA 量和洗脫體積有關，初始量越少、洗脫體積越少，回收率越低。

6.對于<100 bp 和>10 kb 的 DNA 片段可以適當的增加吸附和洗脫的時間。

操作步驟

使用前請先在漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。所有離心步驟均為使用臺式離心機在室溫下離心。

一、從 PCR 反應液或酶切反應液中回收 DNA

1.完成 PCR 擴增或其他酶切反應操作后，移取反應混合液（含有預純化的 DNA）至干凈的離心管。

2.加入 3 倍體積的溶液 PC 至反應混合液中（如 50ul 反應混合液加入 150ul 的結合液）,震蕩混合均勻。

3.將吸附柱放入收集管中，移取上一步混合液至吸附柱，室溫放置 2 min，以 12,000 rpm(~13,400×g )離心 1 分鐘，丟棄收集管中的懸液，將吸附柱 CB1 放回收集管中。

注意：若樣本體積超過 700ul，可分次加入并重復此步驟。

4.加入 700ul 的漂洗液至吸附柱中，靜置 1 分鐘以平衡管柱膜，于 12,000 rpm(~13,400×g )離心 1 分鐘，丟棄懸液，將吸附柱 CB1 放回收集管中。

5.重復操作步驟 4。

6.將吸附柱 CB1 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )離心 2 分鐘，將吸附柱開蓋置于室溫放置數分鐘，以去除、晾干殘余的漂洗液。

注意：漂洗液中乙醇的殘留會影響后續的酶切、PCR 等實驗

7.將吸附柱 CB1 置于一個干凈離心管中，向吸附膜中間位置懸空滴加適量的洗脫緩沖液 TB，室溫放置 2 min。12,000 rpm (~13,400×g )離心 2 min 收集 DNA 溶液。

注意：洗脫體積不應小于 30 μl，體積過少影響回收效率。洗脫液的 pH 值對于洗脫效率有較大影響，若后續做測序，需使用 ddH2O 做洗脫液，并保證其 pH 值在 7.0-8.5 范圍內，pH 值低于 7.0 會降低洗脫效率；且 DNA 產物應保存在-20°C，以防 DNA 降解。為了提高 DNA 的回收量，可將離心得到的溶液重新加回離心吸附柱中，室溫放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2 min，將 DNA 溶液收集到離心管。

二、從瓊脂糖凝膠中回收 DNA 片段

1.完成電泳后，將單一的目的 DNA 條帶從瓊脂糖凝膠中切下（盡量切除多余部分）放入干凈的離心管中，稱取重量（如果凝膠重為 0.1 g，其體積可視為 100 μl）。

2.向膠塊中加入 2 倍體積（如果瓊脂糖凝膠濃度＞2%，則加入 3 倍體積）的溶液 PC，60℃水浴孵育 5-15 min或更久，其間不斷溫和地上下翻轉離心管，直至膠塊充分溶解（若膠塊的體積過大，可事先將膠塊切成碎塊）。

注意：膠塊完全溶解后將膠溶液溫度降至室溫再上柱，因為吸附柱在室溫時結合 DNA 的能力較強。

3.將吸附柱放入收集管中，移取上一步溶膠液至吸附柱，以 12,000 rpm(~13,400×g )離心 1 分鐘，丟棄收集管中的濾液，將吸附柱 CB1 放回收集管中。

注意：若樣本體積超過 700ul，可分次加入并重復此步驟。

4.可選步驟：向吸附柱 CB1 加入 400ul 的溶液 PC，以 12,000 rpm(~13,400×g )離心 1 分鐘，丟棄收集管中的濾液，將吸附柱 CB1 放回收集管中（此步驟可去除殘余的瓊脂糖凝膠，以避免純化的 DNA 進行酶切反應時出現抑制現象）。

5.向吸附柱加入 700ul 的漂洗液，靜置 1 分鐘以平衡管柱膜，于 12,000 rpm(~13,400×g )離心 1 分鐘，丟棄濾液，將吸附柱 CB1 放回收集管中。

6.重復操作步驟 5。

7.將吸附柱 CB1 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )離心 2 分鐘，將吸附柱開蓋置于室溫放置數分鐘，以去除、晾干殘余的漂洗液。

注意：漂洗液中乙醇的殘留會影響后續的酶切、PCR 等實驗。

8.將吸附柱 CB1 置于一個干凈離心管中，向吸附膜中間位置懸空滴加適量洗脫液 TB，靜置 2 分鐘，室溫放置 2 min，12,000 rpm (~13,400×g )離心 2 min 收集 DNA 溶液。

注意：洗脫體積不應小于 30 μl，體積過少影響回收效率。洗脫液的 pH 值對于洗脫效率有較大影響，若后續做測序，需使用 ddH2O 做洗脫液，并保證其 pH 值在 7.0-8.5 范圍內，pH 值低于 7.0 會降低洗脫效率；且 DNA 產物應保存在-20℃，以防 DNA 降解。為了提高 DNA 的回收量，可將離心得到的溶液重新加回離心吸附柱中，室溫放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2 min，將 DNA 溶液收集到離心管。

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期刊：《Scientific Reports 6, Article number: 29069 (2016)》 PMID：27353337

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通用型DNA純化回收試劑盒

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