無內毒素質粒小提中量試劑盒

464.00元

儲存條件 本試劑盒在室溫（15-25℃）干燥條件下，可保存12個月；更長時間的保存可置于2-8℃。（注意：當低溫貯存時，使用前應先將試劑盒內的溶液在室溫中放置一段時間，必要時可在37℃水浴中預熱10 min，以平衡溶液溫度）。單獨包裝的RNase A在室溫可穩定保存12個月以上。加入RNase A后的溶液P1應置于2-8℃保存，可穩定保存6個月。產品簡介 本試劑盒采用獨特的硅膠膜吸附技術，高效專一地結合質粒DNA。同時采用特殊的去內毒素溶液ER和過濾柱CS1，可有效的去除內毒素、蛋白等雜質；整個提取過程僅需1個小時，方便快捷。以下操作步驟適用于提取5-15 ml過夜培養的大腸桿菌,質粒提取得率和質量與宿主菌的種類和培養條件，細胞的裂解，質粒拷貝數，質粒的穩定性，抗生素等因素有關。使用本試劑盒提取的質粒DNA可適用于轉染多種細胞及各種常規操作，包括酶切、PCR、測序、連接等實驗。注意事項 請務必在使用本試劑盒之前閱讀此注意事項。 1.溶液 P1 在使用前先加入 RNase A（將試劑盒中提供的 RNase A 全部加入），混勻，置于 2-8℃保存。2.使用前先檢查溶液 P2 和 P3 是否出現渾濁，如有混濁現象，可在 37℃水浴中加熱幾分鐘，即可恢復澄清。3.所有離心步驟均為使用臺式離心機室溫下進行離心，速度為 12,000 rpm (~13,400×g )。4.去內毒素溶液 ER 在多次開蓋使用后，可能會有細微的顏色變化，不影響最終質粒提取效率和純度。5.提取的質粒量與細菌培養濃度、質粒拷貝數等因素有關。如果所提質粒為低拷貝質粒或大于 10 kb 的大質粒，應加大菌體使用量，同時按比例增加 P1、P2、P3 的用量，洗脫緩沖液應在 65-70℃預熱。可以適當的延長吸附和洗脫的時間，以增加提取效率。操作步驟 使用前請先在漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。 本產品僅供科研使用，請勿用于臨床診斷及其它用途1.取5-15 ml過夜培養的菌液加入離心管中，12,000 rpm (~13,400×g ) 離心1 min，盡量吸除上清。注意：菌液較多時可以通過幾次離心將菌體沉淀收集到一個離心管中, 菌體量以能夠充分裂解為佳，過多的菌體裂解不充分會降低質粒的提取效率。 2.向留有菌體沉淀的離心管中加入500 μl溶液P1 （請先檢查是否已加入RNaseA），使用移液器吸吐或渦旋振蕩器徹底懸浮細菌細胞沉淀。注意：請務必徹底懸浮細菌沉淀，如果有未徹底混勻的菌塊，會影響裂解，導致提取量和純度偏低。 3.向離心管中加入500 μl溶液P2，溫和地上下翻轉6-8次使菌體充分裂解。注意：溫和地混合，不要劇烈震蕩，以免污染基因組DNA。此時菌液應變得清亮粘稠，所用時間不應超過5 min，以免質粒受到破壞。如果未變得清亮，可能由于菌體過多，裂解不徹底，應減少菌體量。 4.向離心管中加入500 μl溶液P3，立即溫和地上下翻轉6-8次，充分混勻，此時會出現白色絮狀沉淀，然后室溫放置10 min左右，12,000 rpm (~13,400×g ) 離心10 min，此時在離心管底部形成沉淀。注意：P3加入后應立即混合，避免產生局部沉淀。如果上清中還有微小白色沉淀，可再次離心后取上清。 5.將上一步收集的上清液分次加入過濾柱CS1（過濾柱放入收集管中），12,000 rpm(~13,400×g ) 離心2min，小心地將過濾離心后收集管中得到的溶液分次加入吸附柱CP2中（吸附柱放入收集管中），（如果過濾柱中有殘余的液體，說明步驟4的上清中雜質過多，可以延長離心的時間；如果離心后收集管底部有少量的沉淀，盡量地吸取上清）。6.12,000 rpm (~13,400×g ) 離心1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CP2放入收集管中。7.向吸附柱CP2加入750 ml 去內毒素溶液ER（已經加入異丙醇），靜置2分鐘使管柱膜平衡，室溫12,000rpm (~13,400×g)離心1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱重新放回收集管中。8.向吸附柱CP2中加入700 μl漂洗液PW（請先檢查是否已加入無水乙醇），12,000 rpm(~13,400×g ) 離心1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CP2放入收集管中。注意：加入漂洗液PW后，如果室溫靜置2-5 min，有助于更好地去除雜質。 9.重復操作步驟8.10.將吸附柱CP2重新放回收集管中，12,000 rpm (~13,400×g ) 離心2 min，目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除。注意：漂洗液中乙醇的殘留會影響后續的酶反應（酶切、PCR等）實驗。為確保下游實驗不受殘留乙醇的影響，建議將吸附柱CP2開蓋，置于室溫放置數分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余的乙醇。 11.將吸附柱CP2置于一個干凈的離心管中，向吸附膜的中間部位懸空滴加100-300 μl洗脫緩沖液TB，室溫放置2 min，12,000 rpm (~13,400×g ) 離心1 min將質粒溶液收集到離心管中。注意：洗脫緩沖液體積不應少于100μl，體積過小影響回收效率。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響，若后續做測序，需使用ddH2O做洗脫液，并保證其pH值在7.0-8.5范圍內，pH值低于7.0會降低洗脫效率。且DNA產物應保存在-20℃，以防DNA降解。為了增加質粒的回收率，可將得到的溶液重新加入吸附柱中，室溫放置2 min，12,000 rpm(~13,400×g) 離心2 min，將質粒溶液收集到離心管中。

質粒小提中量試劑盒

240.00元

儲存條件該試劑盒置于室溫(15-25℃)干燥條件下，可保存12個月，更長時間的保存可置于2-8℃。2-8℃保存條件下，若溶液產生沉淀，使用前應將試劑盒內的溶液在室溫放置一段時間，必要時可在37℃水浴中預熱10 min，以溶解沉淀。第一次使用前將RNase A加入溶液P1中，混勻后置于2-8℃保存，可穩定保存12個月以上。單獨包裝的RNase A 在室溫可穩定保存12個月以上。產品簡介本試劑盒采用堿裂解法裂解細胞，通過離心吸附柱在高鹽狀態下特異性地結合溶液中的DNA。離心吸附柱中采用的硅基質材料為本公司新型材料，高效、專一吸附DNA，可去除雜質蛋白及細胞中其他有機化合物。以下操作步驟適用于提取5-15 ml過夜培養的大腸桿菌，質粒提取得率和質量與宿主菌的種類和培養條件，細胞的裂解，質粒拷貝數，質粒的穩定性，抗生素等因素有關。使用本試劑盒提取的質粒DNA可適用于各種常規操作，包括酶切、PCR、測序、連接、轉化、文庫篩選、體外翻譯、轉染一些常規的傳代細胞等。注意事項 請務必在使用本試劑盒之前閱讀此注意事項。1.溶液 P1 在使用前先加入 RNase A（將試劑盒中提供的 RNase A 全部加入），混勻，置于 2-8℃保存。2.使用前先檢查溶液 P2 和 P3 是否出現渾濁，如有混濁現象，可在 37℃水浴中加熱幾分鐘，即可恢復澄清。3.注意不要直接接觸溶液 P2 和 P3，使用后應立即蓋緊蓋子。4.所有離心步驟均為使用臺式離心機室溫下進行離心，速度為 12,000 rpm (~13,400×g )。5.提取的質粒量與細菌培養濃度、質粒拷貝數等因素有關。如果所提質粒為低拷貝質粒或大于 10 kb 的大質粒，應加大菌體使用量，同時按比例增加 P1、P2、P3 的用量，洗脫緩沖液應在 65-70℃預熱。可以適當的延長吸附和洗脫的時間，以增加提取效率。操作步驟使用前請先在漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。1.取5-15 ml過夜培養的菌液加入離心管中，12,000 rpm (~13,400×g )離心1 min，盡量吸除上清。注意：菌液較多時可以通過幾次離心將菌體沉淀收集到一個離心管中。收集的菌體量以能夠充分裂解為佳，菌體過多裂解不充分會降低質粒的提取效率。 2.向留有菌體沉淀的離心管中加入500 μl溶液P1（請先檢查是否已加入RNase A），使用移液器吸吐或渦旋振蕩器徹底懸浮細菌細胞沉淀。 注意：如果有未徹底混勻的菌塊，會影響裂解，導致提取量和純度偏低。 3.向離心管中加入500 μl溶液P2，溫和地上下翻轉6-8次使菌體充分裂解。 注意：溫和地混合，不要劇烈震蕩，以免污染基因組DNA。此時菌液應變得清亮粘稠，所用時間不應超過5min，以免質粒受到破壞。如果菌液沒有變清亮，可能是由于菌體過多，裂解不徹底，應減少菌體量。 4.向離心管中加入500 μl溶液P3，立即溫和地上下翻轉6-8次，充分混勻，此時會出現白色絮狀沉淀。12,000 rpm (~13,400×g ) 離心10 min，此時在離心管底部形成沉淀。 注意：P3加入后應立即混合，避免產生局部沉淀。如果上清中還有微小白色沉淀，可再次離心后取上清。 5.將上一步收集的上清液分次加入吸附柱CP2中(吸附柱放入收集管中，其容量為750-800ul)，注意盡量不要吸出沉淀。12,000 rpm (~13,400×g )離心1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CP2放入收集管中。 6.向吸附柱CP2中加入700 μl漂洗液PW（請先檢查是否已加入無水乙醇），12,000 rpm(~13,400×g )離心1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CP2放入收集管中。 7.重復操作步驟6。 8.吸附柱CP2放入收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )離心2 min，目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除。 注意：漂洗液中乙醇的殘留會影響后續的酶反應（酶切、PCR等）實驗。為確保下游實驗不受殘留乙醇的影響，建議將吸附柱CP2開蓋，置于室溫放置數分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余的乙醇。 9.將吸附柱CP2置于一個干凈的離心管中，向吸附膜的中間部位懸空滴加100-300 μl洗脫緩沖液TB，室溫放置2-5 min，12,000 rpm(~13,400×g )離心2 min，將質粒溶液收集到離心管中。 注意：洗脫緩沖液體積不應少于100μl，體積過小影響回收效率。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響，若后續做測序，需使用ddH2O做洗脫液，并保證其pH值在7.0-8.5范圍內，pH值低于7.0會降低洗脫效率。且DNA產物應保存在-20℃，以防DNA降解。為了增加質粒的回收率，可將得到的溶液重新加入吸附柱中，室溫放置2 min，12,000 rpm(~13,400×g) 離心2min，將質粒溶液收集到離心管中。

高純度質粒小提試劑盒

240.00元

儲存條件 該試劑盒置于室溫(15-25℃)干燥條件下，可保存12個月，更長時間的保存可置于2-8℃。2-8℃保存條件下，若溶液產生沉淀，使用前應將試劑盒內的溶液在室溫放置一段時間，必要時可在37℃水浴中預熱10 min，以溶解沉淀。第一次使用前將RNase A加入溶液P1中，混勻后置于2-8℃保存，可穩定保存12個月以上。單獨包裝的RNase A 在室溫可穩定保存12個月以上。 產品簡介 本試劑盒采用堿裂解法裂解細胞，再通過離心吸附柱在高鹽狀態下特異性地結合溶液中的DNA。離心吸附柱中采用的硅基質材料為本公司新型材料，高效、專一吸附DNA。由于增加了過濾柱，與普通的提取方法相比，本試劑盒可去除雜質蛋白及細胞中其他有機化合物，適用于提取1-5 ml過夜培養的大腸桿菌，質粒提取得率和質量與宿主菌的種類和培養條件，細胞的裂解，質粒拷貝數，質粒的穩定性，抗生素等因素有關。 使用本試劑盒提取的質粒DNA可適用于轉染多種細胞及各種常規操作，包括酶切、PCR、測序、連接等實驗。 注意事項 請務必在使用本試劑盒之前閱讀此注意事項。 1.溶液 P1 在使用前先加入 RNase A（將試劑盒中提供的 RNase A 全部加入），混勻，置于 2-8℃保存。 2.使用前先檢查溶液 P2 和 P3 是否出現渾濁，如有混濁現象，可在 37℃水浴中加熱幾分鐘，即可恢復澄清。 3.注意不要直接接觸溶液 P2 和 P3，使用后應立即蓋緊蓋子。 4.所有離心步驟均為使用臺式離心機室溫下進行離心，速度為 12,000 rpm (~13,400×g)。 5.提取的質粒量與細菌培養濃度、質粒拷貝數等因素有關。 操作步驟 使用前請先在漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。 1.取1-5 ml過夜培養的菌液加入離心管中，12,000 rpm (~13,400×g )離心1 min，盡量吸除上清（菌液較多時可以通過幾次離心將菌體沉淀收集到一個離心管中）。 2.向留有菌體沉淀的離心管中加入250 μl溶液P1 （請先檢查是否已加入RNase A），使用移液器吸吐或渦旋振蕩器徹底懸浮細菌細胞沉淀。 注意：如果有未徹底混勻的菌塊，會影響裂解，導致提取量和純度偏低。 3.向離心管中加入250 μl溶液P2，溫和地上下翻轉6-8次使菌體充分裂解。 注意：溫和地混合，不要劇烈震蕩，以免打斷基因組DNA，造成提取的質粒中混有基因組DNA片斷。此時菌液應變得清亮粘稠，所用時間不應超過5 min，以免質粒受到破壞。如果未變得清亮，可能由于菌體過多，裂解不徹底，應減少菌體量。 4.向離心管中加入250 μl溶液P3，立即溫和地上下翻轉6-8次，充分混勻，此時會出現白色絮狀沉淀。12,000 rpm (~13,400×g ) 離心10 min，用移液器小心地將上清轉移到過濾柱CS1（過濾柱放入收集管中），注意盡量不要吸出沉淀。 注意：P3加入后應立即混合，避免產生局部沉淀。如果上清中還有微小白色沉淀，可再次離心后取上清。 5.12,000 rpm (~13,400×g )離心2 min，小心地將離心后收集管中得到的溶液轉移到吸附柱CP1中（吸附柱放入收集管中），（如果過濾柱中有殘余的液體說明步驟4吸取的上清中雜質過多，可以延長離心的時間； 如果離心后收集管底部有少量的沉淀，盡量的吸取上清）。 6.12,000 rpm (~13,400×g ) 離心30-60 sec，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CP1放入收集管中。 7.向吸附柱CP1中加入700 μl漂洗液PW（請先檢查是否已加入無水乙醇），12,000 rpm(~13,400×g ) 離心30-60 sec，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CP1放入收集管中。 8.重復操作步驟7。 9.將吸附柱CP1放入收集管中，12,000 rpm (~13,400×g ) 離心2 min，目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除。 注意：漂洗液中乙醇的殘留會影響后續的酶反應（酶切、PCR等）實驗。為確保下游實驗不受殘留乙醇的影響，建議將吸附柱CP1開蓋，置于室溫放置數分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余的乙醇。 10.將吸附柱CP1置于一個干凈的離心管中，向吸附膜的中間部位滴加50-100 μl洗脫緩沖液TB，室溫放置2 min，12,000 rpm (~13,400×g) 離心2 min將質粒溶液收集到離心管中。 注意：洗脫緩沖液體積不應少于50μl，體積過小影響回收效率。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響，若后續做測序，需使用ddH2O做洗脫液，并保證其pH值在7.0-8.5范圍內，pH值低于7.0會降低洗脫效率。且DNA產物應保存在-20℃，以防DNA降解。為了增加質粒的回收率，可將得到的溶液重新加入吸附柱中，室溫放置2 min，12,000 rpm(~13,400×g) 離心2 min，將質粒溶液收集到離心管中。 低拷貝或大質粒（ >10kb）提取 如果所提質粒為低拷貝質粒或大于10 kb的大質粒，應加大菌體使用量，使用5-10 ml過夜培養物，同時按照比例增加P1、P2、P3的用量，洗脫緩沖液TB應在65-70℃水浴預熱，在吸附和洗脫時可以適當的延長時間，以增加提取效率。其它步驟相同。

質粒小提試劑盒-200次

544.00元

儲存條件 該試劑盒置于室溫(15-25℃)干燥條件下，可保存12個月，更長時間的保存可置于2-8℃。2-8℃保存條件下，若溶液產生沉淀，使用前應將試劑盒內的溶液在室溫放置一段時間，必要時可在37℃水浴中預熱10 min，以溶解沉淀。第一次使用前將RNase A加入溶液P1中，混勻后置于2-8℃保存，可穩定保存12個月以上。單獨包裝的RNase A 在室溫可穩定保存12個月以上。 產品簡介 本試劑盒采用堿裂解法裂解細胞，再通過離心吸附柱在高鹽狀態下特異性地結合溶液中的DNA。離心吸附柱中采用的硅基質材料為本公司新型材料，高效、專一吸附DNA。以下操作步驟適用于提取1-5ml過夜培養的大腸桿菌，質粒提取得率和質量與宿主菌的種類和培養條件，細胞的裂解，質粒拷貝數，質粒的穩定性，抗生素等因素有關。 使用本試劑盒提取的質粒DNA可適用于各種常規操作，包括酶切、PCR、測序、連接、轉化、文庫篩選、體外翻譯、轉染一些常規的傳代細胞等。 注意事項 請務必在使用本試劑盒之前閱讀此注意事項。 1.溶液 P1 在使用前先加入 RNase A（將試劑盒中提供的 RNase A 全部加入），混勻，置于 2-8℃保存。 2.使用前請先檢查溶液 P2 和 P3 是否出現渾濁，如有混濁現象，可在 37℃水浴中加熱幾分鐘，即可恢復澄 清。 3.注意不要直接接觸溶液 P2 和 P3，使用后應立即蓋緊蓋子。 4.所有離心步驟均為使用常規臺式離心機室溫下進行離心，速度為 12,000 rpm(~13,400×g )。 5.提取的質粒量與細菌培養濃度、質粒拷貝數等因素有關。 操作步驟 使用前請先在漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。 1.取1-5 ml過夜培養的菌液加入離心管中，12,000 rpm(~13,400×g ) 離心1 min，盡量吸除上清（菌液較多時可以通過多次離心將菌體沉淀收集到一個離心管中）。 2.向留有菌體沉淀的離心管中加入250 μl溶液P1（請先檢查是否已加入RNase A），使用移液器吸吐或渦旋振蕩器徹底懸浮細菌沉淀。 注意：如果有未徹底混勻的菌塊，會影響裂解，導致提取量和純度偏低。 3.向離心管中加入250 μl溶液P2，溫和地上下翻轉6-8次使菌體充分裂解。 注意：溫和地混合，不要劇烈震蕩，以免打斷基因組DNA，造成提取的質粒中混有基因組DNA片斷。此時 菌液應變得清亮粘稠，所用時間不應超過5 min，以免質粒受到破壞。如果未變得清亮，可能由于菌體 過多，裂解不徹底，應減少菌體量。 4.向離心管中加入250 μl溶液P3，立即溫和地上下翻轉6-8次，充分混勻，此時將出現白色絮狀沉淀。12,000 rpm (~13,400×g )離心10 min。 注意：P3加入后應立即混合，避免產生局部沉淀。如果上清中還有微小白色沉淀，可再次離心后取上 清。 5.將上一步收集的上清液用移液器轉移到吸附柱CP1中 （吸附柱放入收集管中），注意盡量不要吸出沉淀。12,000 rpm (~13,400×g)離心30-60 sec，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CP1放入收集管中。 6.向吸附柱CP1中加入700 μl漂洗液PW（請先檢查是否已加入無水乙醇），12,000 rpm(~13,400×g )離心30-60 sec，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CP1放入收集管中。 7.重復操作步驟6。 8.將吸附柱CP1放入收集管中,12,000 rpm (~13,400×g) 離心2 min，目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去 除。 注意：漂洗液中乙醇的殘留會影響后續的酶反應（酶切、PCR等）實驗。為確保下游實驗不受殘留乙醇的影響，建議將吸附柱CP1開蓋，置于室溫放置數分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余的乙醇。 9.將吸附柱CP1置于一個干凈的離心管中，向吸附膜的中間部位滴加50-100 μl洗脫緩沖液TB，室溫放置2min，12,000 rpm (~13,400×g) 離心2 min將質粒溶液收集到離心管中。 注意：洗脫緩沖液體積不應少于50μl，體積過小影響回收效率。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響，若后續做測序，需使用ddH2O做洗脫液，并保證其pH值在7.0-8.5范圍內，pH值低于7.0會降低洗脫效率。且DNA產物應保存在-20℃，以防DNA降解。為了增加質粒的回收率，可將得到的溶液重新加入吸附柱中，室溫放置2 min，12,000 rpm(~13,400×g) 離心2 min，將質粒溶液收集到離心管中。 低拷貝或大質粒（ >10kb）提取 如果所提質粒為低拷貝質粒或大于10 kb的大質粒，應加大菌體使用量，使用5-10 ml過夜培養物，同時按照比例增加P1、P2、P3的用量，洗脫緩沖液TB應在65-70℃水浴預熱，在吸附和洗脫時可以適當的延長時間，以增加提取效率。其它步驟相同

Vipack 病毒包裝轉染試劑

360.00元

【操作方法】1. 對于貼壁細胞（以下均以6孔板為例，其它培養皿或培養板請根據相應面積換算）：a.將細胞培養于培養皿或培養板內，通常在鋪板后1-2天內長到70-90%。 b. 在轉染前1-2小時，吸去細胞培養液，更換為新鮮的不含抗生素的完全培養液2ml。c. 取2-4μg待轉染的質粒DNA (質粒總體積不宜超過20μl，若有多種質粒請混勻)，以質量體積比1：3加入轉染試劑6~12μl（如2μg待轉染的質粒DNA加入轉染試劑6μl）。d.混勻后，室溫孵育3-5分鐘。e. 把DNA-轉染試劑混合物中加入500μl opti-MEM（若無opti-MEM可使用無血清無雙抗的DMEM或1640，具體根據轉染細胞使用的培養基）,充分混勻后靜置10-15分鐘。 f.后均勻滴加到整個6孔板內（加入前吸出原培養板中500μl培養基），并置于含5%二氧化碳的37oC細胞培養箱內培養。 g. 在轉染后4-6小時左右換液，更換為2ml新鮮的完全培養液，繼續培養。h.通常在轉染約24-48小時后就可以檢測到轉染基因的表達。2. 對于懸浮細胞： a. 離心收集懸浮細胞，用PBS洗滌一次。 b. 按照上面的步驟c)、d)、e）制備DNA-轉染試劑-optiMEM混合物。c. 每106個細胞的沉淀，用500微升DNA-轉染試劑-optiMEM混合物重新懸浮，室溫放置15-20分鐘。 d. 在一個6孔板孔內加入1.5ml完全培養液，然后加入來自上一步的細胞-500微升DNA-轉染試劑-optiMEM混合物，混勻。e. 在含5%二氧化碳的37oC細胞培養箱內培養。 f. 根據實驗要求和轉染試劑對于不同細胞的毒性不同，在4-6小時后離心收集細胞，用PBS洗一次，然后用2毫升完全培養 液重新懸浮細胞，繼續培養。 g. 通常在轉染約24-48小時后就可以檢測到轉染基因的表達。

NewZOL LS 總RNA提取試劑(NewZOL LS Reagent) 200ml

890.00元

功能與使用方法與life品牌的Trizol LS相似 【保存條件】2-8℃長期保存【操作方法】I. 樣本處理1. 組織樣本處理：用勻漿器或其他類似設備勻化組織樣本機械破壞裝置，每 500μL 最多使用 50 mg 組織NewZOL LS。 對于 DNA 含量高的組織（例如脾臟），建議使用 25 mg 組織/ 500μL 試劑。 2. 貼壁細胞樣本處理：除去細胞培養基，通過向培養皿（直徑 3.5 cm，10 cm2）中加入至少 1 mL NewZOLLS 并通過反復吸移來確保完全裂解。（根據培養皿面積而不是細胞數計算試劑量。試劑量不足將導致分離的 RNA 受到 DNA 污染。殘留的勻漿可以在-20 至-80°C 下保存至少一年，以備后用。） 3. 懸浮細胞樣本處理：沉淀細胞，并通過添加 NewZOL LS 直接裂解。 每 5×106個細胞至少加入 500μLNewZOL LS，移液器吹打數次裂解細胞。（添加 NewZOL LS 之前請勿洗滌細胞，細胞洗滌可能會導致 RNA降解。） 4. 液體樣本處理：每 200μL 液體樣品中加入 500μL NewZOL LS 進行均質化和裂解。對于小于 200μL 的樣品體積，請添加 500μLNewZOL LS 并加水至最終體積為 700μL。 5. 富含脂質樣本處理：如上所述均質化富含脂質的樣品。將樣品以 12,000×g 離心 5 分鐘。 離心后，樣品頂部會出現一層脂肪。用移液器吸頭尖端刺穿上層，然后將上清液轉移到新管中。 II. RNA 提取1. 每使用 500μLNewZOL LS 的裂解液中加入 200μL 無 RNase 的水至裂解液中。劇烈搖動樣品 15 秒鐘。在室溫下孵育 5 分鐘。（對于包含 50 mg 組織/ 500μL NewZOL LS 的樣品，建議在室溫下孵育 15 分鐘。） 2. 在室溫下以12,000×g離心樣品15分鐘。含有DNA，蛋白質和多糖的半固體沉淀物形成在試管底部。RNA仍溶解在上清液中。 3. 將 500μL 上清液轉移至新管中。 勿吸太干凈防止污染，在 DNA /蛋白質沉淀上方保留一小部分上清液。（含有 DNA，蛋白質和多糖的沉淀物占勻漿-水混合物總量的約 10％。）4. 加入等體積異丙醇，上下顛倒混勻以沉淀 RNA，在室溫下孵育樣品 10 分鐘。5. 將樣品以 12,000×g 離心 10 分鐘，除去并丟棄上清液。通常，在管的底部以白色沉淀的形式獲得 RNA。對于脾臟樣品，RNA 在試管底部形成凝膠狀膜。用乙醇洗滌后，膜變得更可見。 6. 加入 500μL 75％ 乙醇（無 RNase 水配制）洗滌，輕彈管底使沉淀懸浮，上下顛倒混勻。對于較大的試管，按比例添加 75% 乙醇溶液。 7. 將沉淀以 8,000×g 的速度離心 3 分鐘。移液去除沉淀中的乙醇，重復乙醇洗滌步驟一次。靜置 5-10 分鐘待乙醇揮發，無需過份干燥成固體，干燥成固體的 RNA 沉淀不易溶解 8. 將 RNA 沉淀溶于無 RNase 的水中，在室溫下渦旋 3 分鐘，以實現有效溶解。將得到的 RNA 進行檢測或-65℃長期保存（若需更長時間保存請添加適量 RNA Chill（ES-8520））。 【注意事項】1. RNA 酶污染注意事項：a. 提取過程用品均經過去 RNA 酶處理：玻璃制品可以 150 °C 烘烤 4 小時 ，塑料制品可浸泡于 0.5M NaOH 溶液后用清水沖洗并高壓滅菌，吸頭及離心管類盡量使用一次性無酶吸頭及離心管 b. 佩戴手套及口罩及護目鏡：皮膚上常含有細菌和霉菌，可污染 RNA 制備，且同時是 RNA 酶來源，同時 New ZOL LS 對皮膚有一定毒性，建議佩戴手套及口罩及護目鏡。 c. 盡量于通風櫥內提取：避免吸入提取過程中有毒物質。2. 安全性問題：a. 本品在與皮膚接觸及吞咽有毒性，可導致燒傷。與皮膚接觸后，應立即用洗滌劑和大量水沖洗。如感到身體不適，應立即就醫

30-300ul F3 可調八道移液器,半支消毒

2250.00元

產品規格：Each準確度：±5.00 to 1.0%Compatible Tips：Finntip：300, Flex 300顏色編碼：橙色描述：Finnpipette F3 , 8-ch, 30-300μL通道數：8量程（公制）：30-300μL增量：1μL精密度：2.0 to 0.3%

BioFroxx ，2088GR500 ，酵母粉Yeast extract

200.00元

BioFroxx ，2275MG100 ，膠原酶II型Collagenase II 2-8度

285.00元

1M Tris-HCL溶液(pH7.0)(無酶)

270.00元

ED-9253-500ml 1M Tris-HCL溶液(pH7.0)(無酶) ，此產品為定制版，貨期請詢客服

DNA分子量標準 (250-15000 bp) DNA Ladder (250-15000 bp)

80.00元

DNA分子量標準 (250-15000 bp) DNA Ladder (250-15000 bp)產品簡介：本產品為預混有1×上樣緩沖液的即用型DNA分子量標準，由7條線狀雙鏈DNA條帶組成，適用于對250-15000 bp的雙鏈DNA分子大小的估算和粗略定量。條帶組成：250、1000、2500、5000、7500、10000和15000 bp。其中2500 bp條帶濃度較大，為20 ng/μl，其余條帶濃度約為10 ng/μl。儲存液成分：10 mM TrisCl (pH 8.4)，10 mM EDTA，0.02%溴酚蘭，5%甘油使用說明:1. 建議用于0.5~1.0%的瓊脂糖凝膠電泳，不推薦用于聚丙烯酰胺凝膠電泳；2. 電泳緩沖液可選用1x TAE 或0.5~1x TBE，電壓6~8 v/cm 膠長，電泳時間30~60分鐘；3. 根據上樣孔寬度，用滅菌槍頭吸取5ul本產品，加入上樣孔中；4. 加入待檢測DNA 樣品后開始電泳；5. 電泳結束后，使用溴化乙啶（EB）或其它DNA 染料染色并觀察電泳條帶。注意事項:1. 經檢測，本品室溫放置三個月帶型無變化；但建議低溫保存，以防因操作不慎導致核酸酶污染而引起條帶降解；2. 使用前請勿加熱；3. 當電泳緩沖液緩沖能力下降時應及時更換電泳緩沖液，以免影響分辨效果。

DNA分子量標準 (100-2000 bp) DNA Marker (100-2000 bp)

71.00元

DNA分子量標準 (100-2000 bp) DNA Marker (100-2000 bp)產品簡介: 本產品為預混有1×上樣緩沖液的即用型的穩定、清晰、精準的DNA 分子量標準，由 7 條線狀雙鏈 DNA 條帶組成，適用于對 100~2000 bp 的雙鏈 DNA 分子大小的估算和粗略定量。條帶組成：100、250、500、750、1000、1500、2000bp。其中 750 bp 條帶濃度 最大，為 100 ng/5 μl，其余條帶濃度約為 50 ng/5 μl 。使用說明:1. 建議用于0.5~1.0%的瓊脂糖凝膠電泳，不推薦用于聚丙烯酰胺凝膠電泳；2. 電泳緩沖液可選用1x TAE 或0.5~1x TBE，電壓6~8 v/cm 膠長，電泳時間30~60分鐘；3. 根據上樣孔寬度，用滅菌槍頭吸取5~10ul本產品，加入上樣孔中；4. 加入待檢測DNA 樣品后開始電泳；5. 電泳結束后，使用溴化乙啶（EB）或其它DNA 染料染色并觀察電泳條帶。注意事項:1. 經檢測，本品室溫放置三個月帶型無變化；但建議低溫保存，以防因操作不慎導致核酸酶污染而引起條帶降解；2. 使用前請勿加熱；3. 當電泳緩沖液緩沖能力下降時應及時更換電泳緩沖液，以免影響分辨效果。 PCR Marker

BSA溶液(0.1%,無菌) BSA solution (0.1%, sterile)

120.00元

別名：BSA-PBS solution (0.1%, sterile) PBS-BSA溶液(0.1%BSA,無菌)產品簡介：平衡鹽溶液(Balanced?Salt?Solution，BSS)與細胞生長狀態下的pH值、滲透壓等環境狀態一致，具有維持滲透壓、控制酸堿平衡、供給細胞生存代謝所必需的能量和無機鹽成分等作用，可滿足體外實驗中細胞生存并維持一定的代謝的基本需要。PBS-BSA溶液(0.1%BSA)主要由氯化鈉、氯化鉀、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鉀、BSA組成，不含Ca2+、Mg2+，pH值為7.4，該試劑經過濾除菌，常用于細胞培養過程中細胞的洗滌或其他常規用途。 本產品僅用于科研領域，不用于臨床診斷。

PBS緩沖液 (含5%海藻糖, pH7.2) 1×PBS containing 5 % Trehalose

100.00元

PBS緩沖液 (含5%海藻糖, pH7.2) 1×PBS containing 5 % Trehalose別名：PBS containing 5 % Trehalose, pH7.2 磷酸鹽緩沖液(1×PBS,含5%海藻糖); 5%海藻糖PBS緩沖液; 5%海藻糖磷酸鹽緩沖液;產品簡介：本產品為磷酸鹽緩沖液(1×PBS)含5%海藻糖，由中性磷酸鹽緩沖液與高純度的海藻糖配制而成，pH: 7.2，海藻糖含量為5%(W/V)，是生物學實驗常用緩沖液。本產品僅用于科研領域，不用于臨床診斷。

中性組織細胞固定液 (10%,NBF) Neutral buffered Formalin,10%

200.00元

中性組織細胞固定液 (10%,NBF) Neutral buffered Formalin,10%別名：10% NBF; 固定液; 組織固定液; 組織細胞固定液; 10%福爾馬林中性固定液;產品簡介：固定的目的在于保存細胞和組織的原有形態結構，固定劑能阻止內源性溶酶體酶對自身組織和細胞的自溶、抑制細菌和霉菌的生長。固定劑通過凝固、生成添加化合物等使蛋白質內部結構發生改變，從而使酶失活。固定劑對細胞核細胞外成分發生物理改變。固定液主要分為醛類固定液、汞類固定液、醇類固定液、氧化劑類固定液、苦味酸鹽類固定液等，較為常用的是醛類中的福爾馬林、醇類中的乙醇。中性組織細胞固定液 (10%,NBF)，更有利于保護超微結構。該法為Carson改良法，主要由甲醛、磷酸鹽等組成，其福爾馬林含量為10%。使用方法：1. 一般標本固定時間控制在 1～4h/mm，大標本應適當延長固定時間。2. 固定好的組織，可在中性組織細胞固定液 (10%,NBF)或 70%乙醇中長期保存。注意事項：1. 該固定液有一定刺激性和腐蝕性，請在通風較好的環境下小心操作，避免吸入。2. 固定液 pH 最好接近用中性，pH 范圍 6～8。3. 組織取材的厚度不同，固定時間也不同。常規活檢組織比較適合的厚度為 2～4mm， 一般不超過 6mm。對組織恰當的選材有利于固定液的滲透。4. 固定液的容量應足夠，一般固定液與組織塊的體積比率應大于 10:1。如果容積不夠 大，可以在固定期間更換 1～3 次固定液。5. 溫度對固定的影響很明顯，提高溫度可以加速固定作用，但溫度不宜過高。6. 取出新鮮組織后，應及時固定，無法及時固定時，應保存于生理鹽水中及時送檢。7. 為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

RIPA裂解液（強） RIPA Lysis buffer (strong)

180.00元

RIPA裂解液（強） RIPA Lysis buffer (strong)別名：RIPA buffer(high); RIPA buffer(strong); RIPA buffer; lysis buffer; 蛋白提取試劑盒; 高效組織細胞裂解液; 高效RIPA裂解液(組織/細胞); 蛋白裂解液(組織/細胞);產品簡介：RIPA裂解液是一種傳統的細胞組織快速裂解液，裂解得到的蛋白樣品可用于常規的 Western、IP 等實驗。蛋白樣品可用BCA Protein Assay Kit (C05-02001) 測定蛋白濃度。由于含有較高濃度的去污劑，不能用Bradford法測定RIPA裂解后的蛋白濃度。RIPA 裂解液種類很多，根據其裂解液的強度不同為強、中、弱三類。為保證實驗結果請根據檢測樣本與檢測目的的不同選擇適當的裂解液。請參考附件(小助手)：各種裂解液的主要特點和差異。RIPA裂解液(強)（Powerful?RIPA?Lysis?Buffer）主要由50mM Tris(pH 7.4)，150mM NaCl，1% Triton X-100，1% sodium deoxycholate，0.1% SDS、EDTA 等組成，并含有多種蛋白酶抑制劑成分，可以有效抑制蛋白的降解，維持原有的蛋白間相互作用。含有PMSF(100mM, 100×)一支。本產品僅用于科研領域，不用于臨床診斷。

硫酸魚精蛋白溶液(10%) Protamine sulfate solution (10%)

600.00元

硫酸魚精蛋白溶液(10%) Protamine sulfate solution (10%)產品簡介：硫酸魚精蛋白(Protamine?Sulfate)是從魚類新鮮成熟精子中提取的一種堿性蛋白質的硫酸鹽，具有強堿性基團，在生物體內可與強酸性的肝素結合，形成穩定的復合物，從而使肝素失去抗凝能力。此溶液為10%硫酸魚精蛋白溶液。 本產品僅用于科研領域，不用于臨床診斷。

美國通用Rehydragel@LV鋁佐劑 Rehydragel@LV Alum Adjuvant

400.00元

美國通用Rehydragel@LV鋁佐劑 Rehydragel@LV Alum Adjuvant產品簡介：Rehydragel?吸附劑氫氧化鋁凝膠作為獸醫疫苗的輔劑使用已有多年，在人類生物領域的重要性也日益增長。這些高純度氫氧化鋁凝膠在作為獸醫抗毒素的基體或載體使用時，可產生高度的蛋白吸附能力。Rehydragel輔劑以礦物學上稱為勃姆石的結晶狀羥基氫氧化鋁為基礎。當需要結合帶負電的蛋白時，它們在疫苗中是非常有效的。在生理pH值（7.4）和9至12的零電荷點時它們帶一個正電荷。它們是含有大表面積（約525m2/g）結晶顆粒的水合凝膠。它們的AI2O3 含量范圍為2%至10%。 Rehydragel 系列包括AI2O3濃度很高的經濟型產品，以及高度專門化產品。

50×TAE 緩沖液 50×TAE Buffer

180.00元

50×TAE 緩沖液 50×TAE Buffer別名：Tris-acetic acid buffer (50×TAE); Tris-acetic acid buffer (50*TAE); TAE Buffer,50×; 電泳用Tris-乙酸(TAE, 50X); Tris-乙酸電泳緩沖液(50×TAE);產品簡介：Tris-乙酸電泳緩沖液即Tris?acetate-EDTA?buffer，簡稱TAE。1×TAE工作液中含有40mM?Tris-acetate、1mM?EDTA(pH8.0)。TAE是常用的DNA電泳緩沖液,?本試劑是50倍濃縮的TAE，主要由2M?Tris-acetate，50mM?EDTA組成，使用時需用蒸餾水或去離子水稀釋50倍后使用。 本產品僅用于科研領域，不用于臨床診斷。

1M二硫蘇糖醇(DTT)溶液 1M DTT solution

200.00元

1M二硫蘇糖醇(DTT)溶液 1M DTT solution 別名：DTT溶液(1mol/L,RNase free); DTT溶液(1mol/L);產品簡介：二硫蘇糖醇簡稱DTT，CAS：27565-41-9，分子式為C4H10O2S2，分子量：154.2。DTT與巰基乙醇作用相似，是巰基化DNA的還原劑和去保護劑，以用于還原蛋白質中二硫鍵，有抗氧化作用。DTT的刺激性氣味和毒性比巰基乙醇低很多。DTT溶液(1mol/L, RNase?free)主要由DTT、乙酸鈉、DEPC處理水等組成，過濾除菌。蛋白質巰基還原實驗DTT的常用工作濃度是1-10 mM。 本產品僅用于科研領域，不用于臨床診斷。